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流式細胞術(shù)實驗操作步驟
點擊次數(shù):381 更新時間:2025-05-27

流式細胞術(shù)實驗操作步驟

 

流式細胞技術(shù)(Flow cytometry, FCM)是利用流式細胞儀進行的一種單細胞定量分析和分選技術(shù)。流式細胞術(shù)是單克隆抗體及免疫細胞化學技術(shù)、激光和電子計算機科學等高度發(fā)展及綜合利用的高技術(shù)產(chǎn)物,它能有效地從單細胞水平區(qū)分異質(zhì)性細胞群體,檢測對象包括但不限于懸浮細胞、貼壁細胞或從實體組織分離的單細胞懸液和其他生物顆粒。

 

一、細胞表面染色步驟

1.細胞準備:

1.1 采集全血或組織(脾,淋巴結(jié),胸腺和骨髓等),用細胞染色buffer(或PBS)制成單細胞懸液。對于體外刺激的細胞,直接將刺激后的細胞懸浮在細胞染色buffer(或PBS)中,然后進行第2步。

1.2 加滿細胞染色buffer(或PBS, 1000 rpm 離心細胞懸液5分鐘,棄掉上清。

 

2. 紅細胞裂解:

2.1 如果需要裂解紅細胞(如脾臟),將10×紅細胞裂解液(RBC)用H2O稀釋到1×,放置到室溫。將細胞重懸于3 mL 1 × RBC中,室溫孵育5分鐘。

2.2 加入10 mL細胞染色buffer(或PBS)終止紅細胞裂解,1000 rpm離心細胞懸液5分鐘,棄掉上清。

2.3 重復洗滌一次,同步驟1.2。

2.4 細胞計數(shù),用細胞染色buffer(或PBS)將細胞制成1×107 /mL懸液。將100 μL細胞懸液加入流式管中備用。

 

3. 封閉Fc受體:

        封閉Fc受體能減少染色過程中的非特異性染色。小鼠中,純化的CD16/CD32單抗能和FcγR/Ⅱ結(jié)合,封閉非特異性染色,可加入5-10 μg/mLAnti-Mouse CD16/32單抗100 μL,冰上孵育10分鐘。對于人和大鼠,可直接使用過量的與熒光抗體相同來源和亞型不相關(guān)的純化Ig或者血清進行阻斷。

 

4. 細胞染色:

4.1 按照說明書的推薦用量加入熒光標記的抗體,混勻后置于冰上,避光孵育30分鐘。

4.2 加入5 mL FACs buffer (PBS) 重懸細胞,1000 rpm離心細胞懸液5分鐘,棄掉上清。

4.3 加入0.5 mL FACs buffer(PBS)重懸細胞,用流式細胞儀進行檢測和分析。

 

注意事項

1. 在抗體使用之前,快速離心一下,使之聚集到管的底部。

2. 熒光標記的抗體應(yīng)該避光4℃保存,不要冷凍。

3. 當染色的時候,固定或延遲分析可能降低某些抗體的熒光信號。為了得到更好的結(jié)果,染色后應(yīng)該馬上分析。

 

二、細胞內(nèi)細胞因子染色步驟

1. 細胞準備:

1.1 收集細胞,用細胞染色buffer(或PBS)制成單細胞懸液,調(diào)整細胞濃度約為1 × 107/mL

1.2  如需裂解紅細胞,將紅細胞裂解液(RBC)稀釋至1×,并平衡至室溫,用適量的1×紅細胞裂解液將細胞懸起,室溫避光孵育10分鐘;加入細胞染色buffer(或PBS)終止裂解,1000 rpm離心5分鐘,棄去上清。加入細胞染色buffer(或PBS)重復洗滌一次,調(diào)整細胞濃度約為1 × 107/mL。

1.3 100 μL細胞/管(約1 × 106細胞),分別加到已經(jīng)標記好的流式管底部。

 

 

2. 固定:

2.1 如需要表面染色,則依照“細胞表面染色步驟"選用適宜抗體進行表面染色。然后用稀釋至1×的細胞固定/破膜液(Fixation/Permeabilization buffer),將流式管中的細胞懸起,室溫避光孵育30分鐘。

2.2 1000 rpm離心5分鐘,棄去上清。

 

 

3. 破膜:

3.1 用稀釋至1×細胞破膜buffer將固定過的細胞懸起,1000 rpm離心力離心5分鐘,棄去上清。

3.2 重復洗一次,1000 rpm離心5分鐘,棄去上清。

3.3 加入1 mL 1×細胞破膜buffer,4℃避光孵育30分鐘;1000 rpm離心5分鐘,棄去上清。

 

 

4. 胞內(nèi)染色:

4.1 100 μL 1×細胞破膜buffer重懸細胞,加入相應(yīng)的抗體,混勻,4℃避光孵育至少30分鐘。

4.2 加入2 mL 1×細胞破膜buffer懸起細胞,1000 rpm離心5分鐘,棄去上清。

4.3 加入2 mL細胞染色buffer(或PBS)懸起細胞,1000 rpm離心5分鐘,棄去上清。

4.4 加入0.5 mL細胞染色buffer(或PBS)重懸細胞,用流式細胞儀進行檢測和分析。

 

注意事項

1. 同一個細胞同時做細胞表面和細胞內(nèi)的蛋白,建議先做細胞表面染色,再固定、破膜。

2. 細胞內(nèi)染色推薦使用同型對照。

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